摘要
基于酶诱导碳酸钙沉淀(EICP)技术,使用植物脲酶对沙漠风积沙进行改良加固试验。为寻求价格低廉和操作简单的脲酶提取方法,以土豆为原材料,去离子水、甘油水溶液和乙醇水溶液为提取液,通过破碎冷藏及高速离心方法成功地从土豆中分离提取出植物脲酶,分析提取过程中不同提取液对脲酶提取效果的影响,基于EICP技术,利用土豆脲酶液对风积沙进行改良处理。结果显示,在3种提取液中,效果最优的是乙醇溶液,甘油水溶液次之,去离子水提取效果最差。而当固液比为1:6、乙醇溶液浓度为30%时,脲酶活性值最高且提取效果最佳。在风积沙改良试验中,试件表面形成了坚硬的结皮层并具有较高的抗压强度,随着浸泡脲酶次数的增加,无侧限抗压强度逐渐增强。
目前,土地荒漠化仍然是一个严重的环境问题。防风固沙是荒漠化治理的有效方案,目前采用的主要方法有工程治沙、化学治沙和生物治沙,但已逐渐不能满足新型、高效、经济和环保的要求。作为一种新型和环保技术,近年来,生物诱导碳酸钙沉淀技术被广泛应用于土木工程中。目前主要为微生物诱导碳酸钙沉淀(MICP)和酶诱导碳酸钙沉淀(EICP),二者机理较为相似:脲酶能将尿素分解为碳酸根离
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近年来,这些技术广泛应用于各个领域。刘汉龙
为满足对于脲酶的大量需求和寻找脲酶提取化途径,减少脲酶的使用成本,许多学者开展了相关研究,Nam
以土豆为原材料,研究提取具有活性且有矿化作用的植物脲酶的可行性及其影响因素,利用EICP技术,使用土豆脲酶加钙源溶液对风积沙进行改良处理,通过室内试验研究其在沙漠中防风固沙的应用前景。
土豆脲酶的具体提取方法:
1)土豆预处理之后洗净削皮备用。
2)称重10 g土豆,并切成细小块状,放入容器内。
3)向容器内加入40 mL浓度为30%的乙醇溶液,固液比(土豆质量与提取液的比值)设定为1:6。将土豆与乙醇混合液加入粉碎机中粉碎。静置1 min后倒入离心管内,放置在4 ℃恒温冰箱内冷藏24 h。
4)将冷藏好的混合液摇晃均匀后放入低温高速离心机中离心(4 ℃、4 000 r/min、15 min)。离心完成后,离心管中上部的上清液为粗脲酶溶液,底部为残留沉淀。
5)分离离心管中底部沉淀,加入乙醇溶液,摇晃均匀,冷藏1 h后摇匀,再次放入低温高速离心机中离心,取离心管中上部的粗脲酶溶液。
土豆脲酶的提取工艺流程如

图1 脲酶提取工艺流程图
Fig. 1 Flow chart of urease extraction process
溶液的电导率与尿素的水解量成正比,通过测定脲酶溶液每分钟电导率变化值来衡量脲酶的活
在室温条件下配置2 mol/L的尿素溶液待用,在容器内加入25 mL的2 mol/L的尿素溶液和20 mL的无菌蒸馏水,搅拌稀释后投放5 mL的待测物并迅速搅拌,使用便携式电导率仪测试反应液的电导率(μS),在反应前5 min内,每隔30 s记录一次电导率数值,最后,计算平均每30 s的电导率变化值K(μS/min)。通过测定脲酶液平均每30 s的电导率变化值K(μS/min),由
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式中:A为尿素水解量与溶液电导率变化量二者之间换算的经验系数,一般取11.11。
为了确保更好的固化效果,试验开始前需对试验用土进行清洗。清洗方法为:将试验沙土放入桶中,加入0.1 mol/L的NaOH溶液均匀搅拌,静置12 h后搓洗干净,将浸泡液倒出,加入去离子水,将沙粒冲洗至中性,然后再加入0.1 mol/L的HCl溶液,静置12 h后,重复上述过程,搓洗干净,用去离子水再清洗一遍,清洗完成后将pH值调至7,放入烘箱中烘干待
将烘干待用土体装入尺寸为40 mm×80 mm的圆柱形模具,具体制作过程:
1)准备反应所需的钙源溶液待用。钙源溶液为30 g/L尿素和73.5 g/L二水氯化钙(尿素与钙离子的摩尔比为Urea:C
2)制备土豆脲酶备用。在自制的圆柱形模具中直接装满风积沙,将制备好的40 mL土豆脲酶溶液缓慢均匀地倒入模具中,把模具放入钙源溶液中浸泡,静置反应2 d,作为矿化反应的第1个周期。另外,将40 mL的去离子水缓慢均匀地倒入装满风积沙的自制圆柱形模具内作为空白对照组,每组设置3个平行试样。
3)完成第1个周期后,将上述模具放入土豆脲酶溶液中浸泡30 min,浸泡完成后再次放入钙源溶液中浸泡,静置反应2 d,作为矿化反应的第2个周期。重复此试验步骤,作为矿化反应的第3个周期,待反应完全后,将试验模具取出,养护并自然风干。
在室温条件下,把从土豆中提取出的上清液备用。在容器内倒入25 mL的尿素溶液,加入20 mL的无菌蒸馏水,搅拌稀释后倒入5 mL的上清液继续搅拌,通过电导率仪测量发现,脲酶活性发生变化,并确定土豆中有脲酶的存在,证明了方案的可行性。
选取去离子水、质量分数为30%的乙醇溶液、质量分数为30%的甘油作为提取液,分别设置固液比为1:1、1:2、1:3、1:4、1:5、1:6、1:7、1:8、1:9和1:10,将不同的混合溶液粉碎并摇晃均匀后,放入4 ℃冰箱中冷藏24 h,之后放入低温高速离心机中离心,得到土豆脲酶溶液,通过电导率仪测得不同提取液下单位时间内土豆脲酶的变化情况。
经离心后发现,以去离子水和乙醇溶液为提取液时,离心后分为上下两层溶液,下层为沉淀,上层为脲酶溶液。以甘油为提取液时,离心完成后溶液分为3层,下层为沉淀,中层为脲酶溶液,上层有少量的黏稠层。在不同提取液和不同固液比条件下,通过电导率仪测得对应溶剂下单位时间内土豆脲酶的变化情况,如

图2 不同提取液下脲酶单位活性变化
Fig. 2 Changes of urease activity in different extracts
由
3种提取液中,乙醇溶液做提取液时固液比在1:6时最优。在最优条件下,设置乙醇浓度为10%、20%、30%、40%、50%、60%和70%,测得单位时间内不同浓度下乙醇溶液土豆脲酶酶活变化情况,如

图3 不同乙醇浓度下脲酶活性的变化
Fig. 3 Changes of urease activity under different ethanol concentrations
由
为验证从土豆提取的脲酶在与钙源溶液反应时是否能产生碳酸钙,进行了XRD与SEM试验,具体步骤如下:
1)在开始验证反应前,准备反应所需的钙源溶液待用。钙源溶液为30 g/L的Urea和 73.5 g/L的CaCl2·2H2O(尿素与钙离子的摩尔比为Urea:C
2)将制备好的土豆脲酶溶液和钙源溶液混合,搅拌均匀(1:3)并静置,反应完全后有沉淀生成;同时,将对照土豆脲酶溶液与不含尿素的钙源溶液混合,搅拌均匀(1:3)并静置,结果无矿化产物生成。
3)将反应完全的混合液移去上清液,并向里面加入稀盐酸溶液,有泡沫和气泡生成,初步证明沉淀中存在碳酸钙。为进一步确定生成的矿物成分,将试样表面生成的物质进行扫描电镜(SEM)和X射线衍射(XRD)试验。

图4 沉积物XRD图谱
Fig. 4 XRD spectrum of sediments

图5 沉积物SEM图
Fig. 5 SEM of sediment
试件制备、养护、风干和拆模完成后(

(a) 空白对照

(b) 处理1次

(c) 处理2次

(d) 处理3次
图6 养护完成后的试件
Fig. 6 Specimen after curing

图7 试样的碳酸钙含量与无侧限抗压强度
Fig. 7 Calcium carbonate content and unconfined compressive strength of samples
由

图8 抗压强度与碳酸钙含量关系图
Fig. 8 Relationship between compressive strength and calcium carbonate content
EICP技术处理后的试件表面有一层坚硬的结皮层,经无侧限抗压强度试验破坏的试件更明显,如

(a) 处理3次的试样

(b) 处理1次的试样
图9 无侧限抗压强度中试件的破坏形式
Fig. 9 Failure mode of specimens in unconfined compressive strength
在脲酶(植物)固化砂的无侧限抗压强度试验中,Zhao
1)首次从土豆中成功提取出土豆脲酶,并初步建立了提取流程,即采取恒温高速离心方式获取土豆脲酶溶液。经检测发现,提取出的土豆脲酶具有活性,且能进行矿化反应,反应产物为碳酸钙。
2)提取液分别为去离子水、甘油及乙醇溶液时,乙醇溶液的提取效果最好,甘油溶液的提取效果次之,去离子水的提取效果最差;以质量分数为30%的乙醇溶液作提取液,固液比为1:6时,脲酶的提取效果最佳。
3)以土豆脲酶为脲酶来源,可以经EICP技术固化后处理风积沙,固化试样的无侧限抗压强度随脲酶浸泡次数的增加而逐渐增强,处理3次后试样的无侧限抗压强度可达187 kPa。同时也验证了采用EICP技术,利用土豆提取的脲酶治理风积沙表面扬沙的可行性,为沙漠地区防风固沙、遏制扬沙等环境问题提供了新的治理方案。
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