蓝绿藻是自然水体中最常见的藻类,它不仅影响湖泊水质,更威胁饮用水安全,如果藻类去除不够彻底,将直接影响饮用水水质。化学除藻是一项比较成熟的技术,如氯化除藻、臭氧除藻、高锰酸钾除藻,它可直接杀死藻细胞而防止藻类的再次繁殖,但投加的化学药品会产生二次污染[1]。
电化学杀藻一方面源于外电场对细胞膜的电击穿透、对细胞代谢的电渗和电泳作用,导致细胞质流出,藻类死亡;另一方面源于电解过程中产生的强氧化性物质(如·OH、ClO-、O3、H2O2、S2O82-等)[2-3]对细胞膜和细胞核的破坏,以及蛋白质及碳水化合物的降解,最终导致细胞的死亡,从而达到杀藻并抑制水体中藻类生长的目的[4]。Lacasa等[5]认为活性氯等氧化性物质是电化学氧化杀灭大肠杆菌的主要原因。Patermaraxis等[6]指出电场本身对微生物细胞是有害的,电场可以导致不可逆的膜渗透现象的发生,从而致使生物的正常生理功能受到影响。电解过程产生的氧化性物质中,HClO、ClO-、H2O2、S2O82-等在水体中的半衰期较长[7],进一步加剧了已经受损藻细胞的损伤程度,达到杀藻且持续抑制藻类生长的目的。Liang等[8]使用RuO2/Ti电极研究了电化学对藻细胞的即时杀藻效果,证明了电化学方法可有效灭活藻细胞;Xu等[9]研究了RuO2/Ti电极电化学氧化的抑藻效果,发现RuO2/Ti电极可有效抑制藻细胞生长;掺硼金刚石薄膜电极(Boron-doped diamond,以下简称BDD)特性优良,电解中产生的·OH容易进入主体溶液,更多地参与藻细胞的氧化,且裸露的电极表面活性点也增加了电化学的直接氧化[10]。Mascia等[7]使用BDD电极预处理小球藻,研究了不同Re及电流密度情况下BDD电极对藻细胞的即时灭活效果,发现BDD电极可有效杀死藻细胞。
BDD电极对藻类生长抑制的研究并无报道,笔者以BDD为阳极,利用BDD电极的优良特性,研究电流密度、电解时间、初始pH、氯离子浓度对高浓度含藻水中铜绿微囊藻生长抑制的影响,并利用扫描电子显微镜观察处理前后藻细胞形态变化研究杀藻机理。
整个反应系统由电源、磁力搅拌器、电解槽、电极板组成。电解槽为300 mL烧杯,实验有效容积为300 mL。阴极及阳极均采用板状电极,分别为AISI201型不锈钢和钽衬底BDD薄膜电极,极板间距为0.7 cm,有效面积为29.25 cm2,极水比(阳极工作面积与实验有效容积之比)为0.097 5 cm-1。电源由M8872型直流电源(5 A/30 V,美尔诺)提供,电解过程中保持电流恒定,并用78-1型磁力搅拌器对实验水样进行搅拌,保持转速为250 r/min。
实验采用的藻种为铜绿微囊藻,购于中国科学院水生生物研究所,编号为FACHB-315,尺寸大小约为3~6 μm。将铜绿微囊藻置于BG-11培养基中,并放在恒温生化培养箱(spx-250B-G)中进行培养,培养条件为:温度26 ℃、光照3 000 lx、光暗比14:10,每天对藻种进行摇晃2~3次。当藻种培养至7 d(对数生长期)后开始实验。实验过程中所用玻璃器皿均由高压锅在温度121 ℃下灭菌。
实验开始前,用灭菌过的BG-11培养基稀释藻种至1.2×109~1.4×109个/L(OD680为0.065~0.072) 作为实验水样,放置1 d后开始实验。研究离子浓度对抑藻效果影响时,先用0.45 μm滤膜真空抽滤后再用无氯离子或无硫酸根离子灭菌过的BG-11培养基稀释至1.1×109~1.4×109个/L,放置1 d后开始实验,电解前加入相应离子浓度NaCl、Na2SO4。实验过程中采用恒流方式供电,所处室温为22±2 ℃,电解前用0.1 mol/L HNO3或0.1 mol/L NaOH调节实验水样pH,pH通过PH301型pH计(HACH,美国)测得。
电解结束后将处理过的水样置于250 mL锥形瓶中进行培养,并测定0~8 d同一时间点实验水样在680 nm处的光密度值,以评价BDD电极对藻细胞的生长抑制效果。利用扫描电子显微镜观察一定电解条件下的藻细胞在电解前后的形态变化。
藻细胞密度最直观地表达生物量多少,可通过血球计数板和光学显微镜(BA310, MOTIC CHINA GROUP CO.LTD)直接计数。同一藻样观察3次,每两个计数值相差范围应小于15%,否则, 重新计数,取3次的平均值进行藻密度计数[11]。利用紫外可见分光光度计(HACH,DR5000) 对藻液进行波长扫描,其在680 nm处有最高吸收峰,因此,用光密度OD680间接表示藻的生长变化[12-13]。
藻细胞形态的观测,观测前首先将电解前后藻溶液进行离心浓缩,然后进行一系列的固定、脱水、置换、干燥、离子溅射镀金后使用MIRA 3 LMH型扫描电子显微镜进行观测[14]。
电流密度不仅影响电场强度,也影响电化学中羟基自由基以及氧化性物质的产生量,因此,提高电流密度,将直接加快电化学氧化进程[15-16]。在电解时间为20 min、初始pH为7、初始藻液OD680为0.071的条件下,铜绿微囊藻在不同电流密度下处理后8 d内的生长状况及藻细胞灭活率见图 2。
由图 2可知,与对照样相比较,不同程度的电流密度均对铜绿微囊藻的生长产生了抑制作用,且电流密度越大,抑制作用越强。当电流密度为5 mA/cm2,电解后培养至4 d时,藻液的光密度OD680由0.71下降为0.060,呈现略微下降的趋势,在4~8 d时间内,OD680由0.060上升为0.084,表明在此电流密度下藻细胞有一部分受到损伤死亡,但大部分仍能继续繁殖,所以,5 mA/cm2的电流强度并不能抑制彻底藻类生长。当电流密度为10、15、17、20 mA/cm2时,在0~8 d培养过程中,藻液逐渐由绿色变为黄色再变为无色,且OD680逐渐下降,表明在此范围内的电流密度产生的氧化性物质可达到彻底抑制藻细胞生长的目的。对10、15、17、20 mA/cm2条件下通过藻细胞计数方法求得藻细胞灭活率,由图 2可知,当电流密度为10、15 mA/cm2时,藻细胞灭活率在初始阶段上升缓慢,表明藻细胞在此电流密度下的损伤程度较小或较少藻细胞受到损伤,而损伤程度较小藻细胞裂解速度较慢。因此,在初始阶段,受损藻细胞在显微镜下仍然能够观察到完整的形态,而随着培养时间的增长,这些藻细胞不断裂解死亡,灭活率不断上升。当培养至8 d时,藻细胞灭活率分别为73.3%、88.0%。而当电流密度为17、20 mA/cm2时,藻细胞灭活率相差不大,且均在初始阶段上升很快,当培养至2 d,藻细胞灭活率已经达到70.0%、75.0%,表明藻细胞在此电流密度下受到较大程度损伤或受损伤藻细胞较多,在培养初期大部分藻细胞裂解死亡。当培养至8 d时,灭活率可达94.7%、95.1%。
对不同电流密度下所需能耗进行分析,由图 3可知,较高电流密度所需能耗较大。当电流密度分别为10、15、17、20 mA/cm2时,所需能耗分别为4.03、4.71、5.17、5.64 kWh/m3。虽然, 电流密度为20 mA/cm2的灭活率与17 mA/cm2的灭活率相差不大,但能耗却高了0.47 kWh/m3。同时, 考虑藻液在处理后的8 d内有较好的灭活率且较经济的情况下,选用电流度17 mA/cm2作为BDD电极抑制藻细胞生长电流。
在电化学氧化技术中,电解时间是一项重要参数,不仅决定了处理效果的好坏,而且与能耗相关[17]。为了在较低的能耗下达到藻类的完全抑制,在电流密度为17 mA/cm2、初始pH为7、初始藻液OD680为0.072的条件下,研究了电解时间分别为10、20、30 min时铜绿微囊藻在电解后8 d内的生长状况,结果如图 4所示。
由图 4可知,当电解时间为10 min时,藻液OD680在电解后由0.072下降至0.065,这是由于电解过程中的直接氧化和间接氧化导致的细胞死亡。而在后续培养8 d时间内,藻液逐渐变绿,OD680呈现稳定增长趋势,表明只有一部分藻细胞受到严重损伤,破损程度较小及未受损藻细胞仍可继续生长。这可能是因为:当电流密度及通电时间相同时,电化学产生的氧化性物质的量是一定的[18]。当电解时间为10 min时,产生的氧化性物质的量较少,并不足以全部裂解藻细胞,而在后续8 d培养过程中藻细胞呈现继续生长的现象。当电解时间为20 min时,后续培养过程中藻液逐渐由绿色变为无色,且OD680稳定下降,说明此条件下可达到完全抑制藻细胞生长的目的。当电解30 min时所需能耗为7.58 kWh/m3,较电解20 min时高2.41 kWh/m3,且较20 min条件下抑制藻类生长无明显促进作用。因此,电解时间选为20 min。
电化学氧化在电解过程中产生的氧化性物质的种类受溶液pH影响[19],且铜绿微囊藻在不同pH环境下的生长状况不同[20]。为了考察初始pH对铜绿微囊藻细胞生长抑制的影响,在电流密度为17 mA/cm2、电解时间为20 min、初始藻液OD680为0.067的条件下,研究了初始pH分别为4、6、7、8、10时铜绿微囊藻在电解后8 d内的生长状况以及电解后溶液pH的变化。
由图 5可知,藻液初始pH在中性及酸性条件下对藻细胞的生长抑制效果较好,而在碱性条件下并不能得到完全抑制。当初始pH为4时,电化学即时杀藻效果是最好的,这是因为此条件下电解产生的气泡尺寸与藻细胞尺寸相近,一部分藻细胞通过电气浮作用被带至溶液表面。把漂浮在溶液表面的藻细胞接种于新鲜培养基进行培养,其OD680在8 d时间里从0.027下降至0.018,说明通过电气浮漂浮至溶液表面的藻细胞已经受到损伤[21]。当pH为4、6、7时,处理后溶液OD680持续稳定下降,表明在此范围内藻细胞受到氧化性物质氧化而逐渐裂解死亡,BDD电极电化学氧化可完全抑制藻细胞生长。而当pH为8、10时,处理后溶液OD680在第2天出现小幅度下降后开始上升,表明此初始pH条件下, 只有部分藻细胞受到损伤而死亡,剩余藻细胞仍能继续生长,BDD电极电化学氧化并不能达到完全抑制藻类生长的目的。
测定不同条件下电解前后及培养至8 d内溶液的pH值,由图 6可知,当初始pH在中性及酸性条件下溶液pH在8 d内出现上升的趋势,并趋于稳定;而当pH在碱性条件下溶液pH在8 d内出现下降,并趋于稳定。陈建中等[20]研究表明,当溶液pH为8~8.5条件下铜绿微囊藻的生长量最高,而由图 6可知,初始pH为8、10时,处理后溶液pH在7.95~8.53范围波动。因此,在此条件下藻细胞的生长条件较其他情况下好,这也是导致细胞生长良好的一个原因。
电解过程中,溶液中的氯离子及硫酸根离子参与氧化性物质的生成,见式(1)~(5)[2-3]。
因此,氯离子浓度、硫酸根离子浓度直接影响半衰期较长氧化性物质活性氯、S2O82-的产量,进一步影响抑藻效果[22]。为了考察氯离子浓度、硫酸根离子浓度对铜绿微囊藻生长抑制的影响,在电流密度为17 mA/cm2、电解时间为20 min、初始藻液OD680为0.065的条件下,以BG-11培养基中氯离子浓度(18 mg/L)、硫酸根离子浓度(30 mg/L)为限值,研究了氯离子浓度分别为0、6、12、18 mg/L时,硫酸根离子浓度分别为0、15、30 mg/L时藻细胞在电解后8 d内的生长状况,见图 7、图 8。
对照样为藻细胞在无CaCl2(图 7)或MgSO4(图 8)的BG-11培养基中的生长状况,由图 7、图 8可知,藻细胞可正常繁殖。如图 7所示,当电解液中无氯离子时,溶液在第2天的OD680下降为0.047,在第4天出现上升现象,OD680为0.050,在第8天时达到0.086。这是因为:在此条件下仅有直接氧化、·OH氧化、S2O82-等其他氧化性物质氧化破坏藻细胞,藻细胞氧化破坏遭到限制,在0~4 d时间内,受损程度较大藻细胞直接裂解死亡,未受损或受损程度较小藻细胞活性降低而不能进行繁殖,OD680出现下降趋势;在4~8 d时间内,受损较小藻细胞在培养过程中进行自身修复而继续生长,OD680又出现上升趋势。当氯离子浓度为6、12、18 mg/L时,OD680均出现稳定下降趋势,说明6 mg/L的氯离子浓度即可在后续培养中加剧破坏藻细胞损伤程度,达到完全抑制藻类生长的目的。但由图 7可以看出,氯离子浓度较高时OD680下降速度较快,这是因为较高氯离子浓度产生较多活性氯,因此,氧化破坏藻细胞能力就越大。
由图 8可知,当溶液中无硫酸根离子时,在后续培养过程中OD680呈稳定下降趋势,且当硫酸根离子浓度升高时,抑制效果变好。说明无硫酸根存在条件下产生的活性氯可达到完全抑制藻细胞生长的目的,这也说明活性氯在抑制藻类生长中起到重要作用,而仅有直接氧化或其他活性物质氧化在此电解条件下并不能达到完全抑制藻类生长的目的,但硫酸根离子浓度也加剧藻细胞的抑制。
为了考察BDD电极电化学氧化抑制藻细胞生长的机理,对处理前以及电流密度分别为10、17 mA/cm2处理后的藻细胞利用扫描电子显微镜进行细胞形态观察,如图 9所示。
由图 9可以看出,电解处理前藻细胞饱满,细胞结构完整;当电流密度为10 mA/cm2时,细胞形态已出现明显变形,不再为椭球型,出现干瘪现象,在后续培养过程中活性氯的进一步氧化使OD680不断下降;当电流密度为17 mA/cm2时,藻细胞受损严重,周围已经有物质流出,说明藻细胞已经破裂,在后续培养过程中因为活性物质的进一步氧化而加剧其裂解死亡。因此,BDD电极电化学氧化破坏藻细胞结构及其完整性,这是导致藻细胞死亡的原因。
1) 电流密度为10 mA/cm2可导致藻细胞结构变形,并达到完全抑制藻类生长的目的;17 mA/cm2和20 mA/cm2电流密度下的抑藻效果较好且相差不大,但是能耗相差0.47 kWh/m3,17 mA/cm2电流密度下可使藻细胞破裂,细胞内物质流出;电解时间20 min即可完全抑制藻类生长,且再增大电解时间对抑藻效果无明显促进作用。
2) 初始pH为中性及酸性时可完全抑制藻类生长;初始pH为碱性时,藻细胞在4 d后出现生长量逐渐增大现象。由于溶液中CO2缓冲体系的形成,不同初始pH下溶液pH出现上升或下降后维持稳定。
3) 当溶液中氯离子、硫酸根离子浓度越高时,电化学氧化对藻细胞的抑制效果越好,但活性氯对藻细胞的氧化破坏起主要作用。当溶液中无氯离子时,后续培养过程中由于无活性氯的氧化作用,受损较小藻细胞通过自身修复仍可继续生长。